Материалы этого раздела подготовил
Артем Демин (manas@cityline.ru)
---------------------------------------------------------------
Обзор
моментов, сопряженных с внутривенными вливаниями этих растворов начнем с
рассмотрения пути, который они должны совершить.
Основных
этапов здесь три. Первый этап - это перенос их в кровяной среде по сосудистому
руслу до воспаленного очага. Второй этап - прохождение через капиллярные стенки
в воспаленном очаге и, наконец, третий этап - проявление действия в тканях
воспаленного очага.
Вводимые
нами вещества не должны изменять своих свойств при смешении с кровью и
оставаться в растворенном виде. Вместе с тем они не должны образовывать крепких
связей с составными частями крови и не должны свертывать ее. В первом случае мы
получили отсутствие действия в дальнейших этапах пути, а во втором случае
получим тромбоз.
Экспериментальной
проверке надлежало дать ответ на следующие вопросы:
1)
Вызывают ли данные вещества изменение биологических свойств крови, т.е. каково
их влияние на свертываемость крови, гемолиз эритроцитов, оседание их и т.д..
2)
Насыщаются ли в крови, рН которой равно 7,30 - 7,36, все основности
сернокислого хрома и он переходит в нерастворимую гидроокись хрома.
Исследование
этих моментов показало следующее:
1) данные
составы значительно задерживают процесс свертывания крови. Гемолиз эритроцитов
почти отсутствует при разведении 1:1. Хотя данные счета эритроцитов не
обнаружили явлений гемолиза, но исследование их резистентности показывало
некоторые сдвиги. Так как индикатором резистентности является гемолиз их, то,
следовательно, мы имеем право заключить, что разведение 1:1 дает гемолиз в
очень малой степени.
Реакция
оседания эритроцитов при смешении с этими составами была значительно замедлена.
2) При
добавлении данного раствора к жидкости, добытой из брюшной полости при водянке
ее (рН этой жидкости был равен 7,4), осадка не было. Наблюдения производились в
обычных пробирках и конусе Тиндаля. Вопрос о возможности проникновения данных
составов в ткани воспаленного очага надлежало [бы] решить эксперименту.
Изучение фильтрации через капиллярные стенки началось со времени Старлинга. Он
показал, что моментом, определяющим фильтрацию из капилляров или поглощение
ими, является отношение величины давления в капиллярах к величине
коллоидно-осмотического давления плазмы. (Старлинг [1]).
В 1923 г.
Ландис вычислил, что в норме, когда разница между гидродинамическим давлением в
капиллярах и коллоидно-осмотическим давлением белковых тел составляет 5 см.
водяного столба, то фильтруется из капилляров 0,033
"Times New Roman";mso-char-type:symbol;mso-symbol-font-family:Symbol'>
При
воспалении, когда каппилярная стенка изменена, то даже при уменьшении давления
объем фильтрации увеличивается в 7 и более раз. Исследования о прохождении
различных белков через капиллярные стенки дополняют это. Через нормальный
эндотелий в некотором количестве могут проходить только альбумины. При развитии
воспаления начинают фильтроваться белки, имеющие частицы большей величины,
именно: глобулины и затем фибриноген (Шаде).
Хофф и
Лейнер [2] подтвердили эту повышенную проницаемость капиллярных мембран опытами
с конго-рот.
Конго-рот,
коллоидная краска крупнодисперсной фазы и поэтому при впрыскивании в кровь
задерживается в кровяном русле. Если же имеется воспаленный очаг, то она
выходит из капиллярного русла и начинает отлагаться в тканях воспаленного
очага. Подтверждением того, что причинным моментом, определяющим это
прохождение через капиллярный эндотелий, являются воспалительные изменения
процессов обмена, служат опыты Гофа. Он вызывал образование серозного пузыря,
накладывая нарывной пластырь и впрыскивая в кровь конго-рот. При наличии только
расширения сосудов, перехода краски в пузырь не наблюдалось. Если в дальнейшем
начиналось воспаление, то краска переходила в пузырь.
Таким
образом, основной момент заключается в увеличении проницаемости сосудистых
стенок в воспаленном очаге и поэтому вероятность проникновения вводимых нами
веществ в ткани воспаленного очага теоретически допустима. Во время этих
исследований наш состав был несколько изменен. В кожевенном деле давно
практикуется способ, смягчалось резкое действие хрома путем добавления алюминиевых
квасцов. В результате экспериментальной проверки мы остановились на следующей
концентрации их:
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
Состав 549. | |
Сернокислый хром - 30 см | |
Коллоидная сера - 50 см
Алюминиевые квасцы 5% - 20 см
Тио-гликолев. к-та- 0,5 см
Молочно-кислый буфер - 60 см
Н
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
Проверка
показала, что этот состав подобно прежним, не обладает антисептическими
свойствами и нестерилен. Это обстоятельство делало бесполезной стерилизацию
шприцов и игл и в дальнейшем мы никогда не стерилизовали их.
Предварительные
исследования показали, что кролики весом 950-1550 гр. свободно переносят
многократные внутривенные вливания состава 549, дозы которых были от 5-10 см3
приступлено к опытам с биколярной палочкой геморрагической сетицемии. Для исключения
влияния индивидуальности опыты ставились сериями. Число опытных и контролей
было одинаково (от 5 до 8). Кролики заражались внутрибрюшинно, дозы брались
смертельные. Опытным кроликам внутривенные вливания производились в одной части
опытов одновременно с заражением, а в другой части через 1 час после заражения.
Всех кроликов под наблюдением было 86.
Результаты
были следующие: все кролики - и опытные, и контрольные - погибли. Анализ
протоколов показал следующее: при совпадении моментов заражения и внутривенного
вливания опытные кролики жили на 6% меньше, чем контрольные и явления
геморрагии у них наблюдались на 33 % чаще.
При
внутривенных вливаниях, сделанных через час после заражения, продолжительность
жизни опытных кроликов на 44% больше, чем контрольных и явления геморрагии у
опытных на 85% реже, чем у контрольных.
Эти
наблюдения показали, что состав 549 в этих условиях частично проявляет свои
свойства. Это следует из факта уменьшения % геморрагий у опытных по сравнению с
контролями во второй части наблюдений. Можно допустить, что причиной отсутствия
геморрагии является уплотнение коллоидов капиллярных стенок в зараженном
участке, под влиянием внутривенных вливаний.
Сопоставляя
результаты, полученные при совпадении момента заражения с моментом лечебного
вливания с результатами, когда вливание делалось через промежуток времени после
заражения, мы видим, что внутривенные вливания только тогда проявляют
положительное действие, когда первое вливание производится при наличии
развернутого процесса.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
***
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
Более
четкие результаты были получены при лечении кроликов, которым внутрикожно
впрыскивался горчичный спирт и горчичное масло.
Методика
опытов была следующая: 0,2 см3 эфирного
горчичного масла растворялось в 1 см3 жидкого вазилина. Из этого жидкого раствора
приготовлялись опытные растворы следующих концентраций: 1 капля исходного
раствора на 1 см3 вазелинового
масла; 2 капли и 5 капель на то же количество вазелина. Внутрикожно вводились
дозы, равные 0,2 см3 этих
смесей.
В первой
части опытов моменты заражения совпадали с внутривенными вливаниями.
Положительного эффекта эти наблюдения не дали.
Вторая
часть опытов отличалась от первой части тем, что парное число кроликов
заражалось и через 4-5 часов, когда явления воспаления были уже резко выражены,
производился отбор опытных и контролей. Кролики с более интенсивными явлениями
брались под опыт и им делались внутривенные вливания.
Приведу
несколько протоколов.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
11.I 1933г.
Кролик белый.
11ч. дня. Внутрикожная инъекция по 0,2 см3 раствора горчичного масла в вазелине
с 2 и 5 каплями (см. описанную выше методику опытов).
4ч. дня. Большие инфильтраты. В зоне инъекции 5 капель, инфильтрат значительно
больший. Внутривенное вливание 6 см3 549.
12.I 1ч.
дня. Места инъекций инфильтрированы, покрасневшие. Намечаются некрозы.
Внутривенное вливание 6 см3
549.
13.I 4ч.
дня. Краснота и инфильтрат уменьшились. Некроз поверхностный в местах инъекций.
Внутривенное вливание 6 см3
549.
14.I
Воспаления почти нет. Инфильтрат очень малый. Явления некроза те же.
Вливания прекращены.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
КОНТРОЛЬ.
11.I Кролик
белый, уши серые.
Заражение одновременное и аналогичное с опытным кроликом.
12.I 3
ч.дня. Места инъекций инфильтрированы, покрасневшие. Намечаются некрозы.
13.I 4 ч.
дня. Краснота усилилась. Инфильтрат увеличился, гораздо больший, чем у
опытного. Некроз по поверхности увеличился по сравнению с опытным.
14.I Некроз
резко обозначен. Воспаление и инфильтрат в прежнем состоянии.
16.I
Явления воспаления стали меньше.
18.I
Воспаление и инфильтрат уменьшаются, но выражены четко. Снят с наблюдения.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
14.I 1933
Кролик белый, уши черные.
11ч. дня. Условия заражения те
же, что и в предыдущем опыте.
4ч. дня. Краснота. Большие инфильтраты. Явления выражены сильнее в зоне 5
капель. Большие инфильтраты. Внутривенное вливание 6 см3
15.I 3ч.
дня. Места инъекций очень мало инфильтрированы. Покраснения нет. Внутривенное
вливание 6 см3
549.
16.I
Красноты нет. Инфильтрации почти нет. Некроза нет. Внутривенное вливание 6 см3
17.I
Ничтожный инфильтрат. Точечное покраснение в месте инъекции 5 капель. Вливания
прекращены.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
КОНТРОЛЬ.
14.I 1933г.
Кролик белый, уши серые.
11ч. дня. Внутрикожные
инъекции. Условия заражения обычные.
4ч. дня. Явления воспаления
выражены слабее, чем у опытного.
15.I 3ч.
дня. Резкая краснота и инфилтрация в области инъекций. Зоны инъекций сливаются.
16.I
Инфильтраты обеих зон слились в один общий. Краснота резкая. Некроз в местах
инъекций. Поверхность некроза в области инъекции 5 капель значительно большая.
17.I
Состояние то же.
19.I Некроз
резко выражен. Краснота чуть меньше. Инфильтрат немного уменьшился.
20.I
Инфильтрат в зоне инъекции 2 капель значительно меньше. В зоне инъекции 5
капель - значительный.
22.I
Покраснение незначительное. Инфильтрат в малой зоне незначителен. Инфильтрат в
большой зоне уменьшился. Некрозы не увеличиваются. Снят с наблюдения.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
16.I 1933г.
Кролик белый.
11ч.30м. дня. Внутрикожные
инъекции. Условия заражения обычные.
5ч.30м. дня. Резкая
инфильтрация и краснота. Внутривенное вливание 6 см3
17.I
3ч.45м. дня. Гиперемии нет. Кожа в области бритой поверхности нормальная. В
области инъекций небольшая инфильтрация. В местах инъекций то[н?]кие, сухие
некрозы. Внутривенное вливание 6 см3 549.
18.I 4ч.
дня. Сухой, тонкий слой некроза. Покраснения и инфильтрации нет. Внутривенное
вливани 6 см3
549.
19.I
Реакций кожных и сосудистых нет. Вливания прекращены.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
КОНТРОЛЬ.
16.I 1933г.
Кролик белый, стриженный лоб.
11ч. 30м. дня. Внутрикожные
инъекции. Условия заражения обычные.
5ч.30м. дня. Незначительная
инфильтрация и краснота.
17.I
Незначительная гиперемия вокруг мест инъекций, которые резко гиперемированы. В
месте инъекции 5 капель инфильтрат значительно больше. Некрозы в местах
инъекций слабо выражены.
18.I
Большой отек, инфильтраты вокруг мест инъекций слились. Резкая краснота.
Некротические места определились более резко.
19.I
Краснота, отек. Резкий некроз.
20.I
Состояние то же.
22.I
Инфильтрация немного уменьшилась. Краснота меньше. Снят с наблюдения.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
Кролик
белый.
22.I 1933г.
2ч. дня. Внутрикожная инъекция 0,2 см3 горчичного спирта в области между лопатками. Место
инъекции сразу побелело, затем приняло зеленовато-белый оттенок.
5ч. дня. Место инъекции на
ощупь пастозной консистенции. Вокруг - незначительный инфильтрат. Внутривенное
вливание 6 см3
549.
23.I 12ч.
дня. Приосмотре место инъекции представляется немного запавшим в отношении
поверхности кожи, на ощупь сухое. Инфильтрата нет.
Внутривенное вливание 6 см3
549.
24.I
Покровы в районе инъекции чрезвычайно сухие и тонкие. Складка ткани в этом
месте гораздо тоньше, чем дубликатура кожи. Инфильтрата нет.
26.I
Состояние то же. Сухой некроз кожи в области инъекции. Вливания прекращены.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
КОНТРОЛЬ.
22.I 1933г.
Кролик белый. Синее пятно на лбу.
2ч. дня. Внутрикожная инъекция
0,2 см3
горчичного спирта в области между лопатками. Развитие явлений аналогично
явлениям у опытного.
23.I Место
инъекции пастозно. Инфильтрат.
24.I Место
инъекции пастозно, возвышается над уровнем кожи. Инфильтрат больше.
26.I Место
инъекции пастозно, серо-зеленого цвета. Вокруг места инъекции воспаление
усилилось. Ткани, взятые в этом месте в складку, значительно толще, чем в
пределах здоровой кожи.
28.I
Влажное омертвение. Вокруг воспаление.
30.I
Частичное отхождение влажных некротических участков. Явления воспаления в
окружающих тканях немного уменьшились. Снят с наблюдения.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
Во всех
опытах (наблюдения велись над 16 парами кроликов) развитие воспалительной
картины резко обрывалось под влиянием внутривенного введения состава 549.
В серии
опытов с морскими свинками раздражителем был хлор. Опыты были поставлены на 8
парах свинок. Иллюстрируем некоторые из них.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
3 VI 1932г.
Взято две свинки: рыжая весом 344 гр. и белая весом 336 гр. и помещены в
стеклянную камеру емкостью в 22,5 литра.
4ч.50м. дня. Введено в камеру
50 см3 хлора.
5ч.10м. дня: Обе свинки вынуты
из камеры на 1,5-2 минуты, затем вновь помещены туда; после чего добавлено 25
см3 хлора.
5ч.18м. дня: обе свинки вынуты
из камеры.
Белая свинка по окончании опыта
находилась в лучшем состоянии, почему и была отобрана для контроля.
5ч.20м. дня: Рыжей свинке
введено в сердце 10 к.с. 549.
5ч. 55м. дня: Белая
(контрольная) пассивна, неподвижна, глаза мутные. Голова опущена на дно клетки.
Лежит, опираясь животом на дно клетки.
Рыжая (опытная) подвижна,
сидит, голову держит хорошо. Глаза более чистые. Сопротивляется, когда ее берут
на руки.
6ч.5м. дня:
у белой - 60 раз в 1 минуту.
Дыхание у рыжей - 25-30 раз в минуту.
4.VI 12ч.
дня: Дыхание у белой - 90 раз в 1
минуту.
Дыхание у рыжей - 30 раз в 1 минуту.
Белая свинка вялая, глубоко и
часто дышит, животом касается дна клетки.
Голова опущена. Рыжая подвижна.
Реберные движения при дыхании меньше, сидит нормально, голову держит хорошо.
После опыта обе свинки не получали пищи. В 12ч. дня обеим была дана крупно
порезанная морковь и петрушка.
Белая в течение трех минут не
трогала пищи, затем несколько раз, откусивши морковь, долго ее жевала и
прекратила еду.
Рыжая свободно глотала и с
жадностью ела морковь и петрушку. Когда миска с пищей была отодвинута, она
подошла к ней и продолжала еду.
Белая в подобном случае
оставалась на месте.
5.VI
Состояние обеих свинок то же.
6.VI Белая
поправляется, более подвижна, ест.
7.VI Обе
свинки в удовлетворительном состоянии.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
ОПЫТ.
9.VI
5ч.30м. дня: Две свинки, рябая весом 558гр. и рыжая весом 665гр., помещены в
камеру, куда в течение одного часа отдельными порциями в 25 см3
В течение опыта рябая почти
неподвижно лежала, а рыжая становилась на задние лапы и почти все время стояла,
опираясь передними лапами на рябую.
Когда обе свинки были вынуты из
камер, то рябая сидеть не могла, падала на бок и лежала неподвижной. Рыжая была
крепче, сидела опираясь на передние лапы и глубоко дышала через открытый рот.
Рябая была выбрана опытной, рыжая контролем. Рябой введено внутрисердечно 10 см3
12ч.20м. ночи: рыжая дышит чаще, чем рябая.
При выслушивании у рыжей в обоих легких масса хрипов - по сравнению с рябой.
При прикладывании руки у рыжей ощущается при каждом вдохе резкая крепитация, у
рябой крепитация наблюдается только при некоторых вдохах и выражена слабее.
10.VI 7ч.
утра: Рыжая очень часто дышит, сосчитать трудно. Вялая, не реагирует на
раздражение. Рябая подвижна, дышит равномерно, вид хороший.
4ч. дня: У рыжей дыхание 75-80 раз в минуту, поверхностное. Пассивна. Состояние
тяжелое. У рябой - дыхание ровное, 30-35 раз в минуту. Общий вид
удовлетворительный.
11.VI
Крепитация у рыжей меньше. Состояние лучше. Рябая внешне здорова.
13.VI
Состояние свинок удовлетворительное. Рябая более подвижна.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
***
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>
Приведем
несколько протоколов из серии опытов, поставленных на кроликах, зараженных
подкожно суточной культурой стафилококка.
<![if !supportEmptyParas]> <![endif]>